表1
操作步骤 | 操作方法 | 试管A | 试管B | 试管C |
1 | 加淀粉溶液 | 2mL | 2mL | 2mL |
2 | 加淀粉酶溶液 | 1mL | 1mL | 1mL |
3 | 温度处理 | 60℃ | 100℃ | O℃ |
4 | 加碘液 | 2滴 | 2滴 | 2滴 |
表2
操作步骤 | 操作方法 | 试管A | 试管B |
1 | 加淀粉溶液 | 2mL | |
2 | 加蔗糖溶液 | 2mL | |
3 | 加斐林试剂甲 | 2mL | 2mL |
4 | 加斐林试剂乙 | 数滴 | 数滴 |
5 | 加淀粉酶溶液 | 1mL | 1mL |
①
②
③
①使用该加酶洗衣粉的最适宜温度为.
②在0℃和75℃时,酶的催化效率基本都为零.但当温度再度恢复到45℃时,后者酶的催化能力已不能恢复,这是因为.
①a、b过程中,酶作用的部位依次是.
②若将获得的DNA片段用PCR技术进行扩增,与细胞内的DNA复制过程相比,利用PCR技术扩增DNA时所需酶的不同之处是.
①谷物的萌发:称取等量小麦、谷子、绿豆三种谷物的干种子,都均分为两份,其中一份浸泡2.5h,放入25℃恒温培养箱,至长出芽体为止.
②酶提取液的制备:将三种谷物的干种子和萌发种子分别里于研钵中,加入石英砂和等量蒸馏水研磨、离心,制备酶提取液.
③反应进程的控制:分别取②制备的酶提取液1mL置于不同的试管中,加入1mL1%的淀粉溶液,25℃保温5min后,立即将试管放入沸水浴中保温5min.
④吸光度的测定:在试管中加入_________、摇匀、加热,当溶液由蓝色变为砖红色后,用分光光度计依次测定各试管的吸光度.
⑤酶活性的计算:将测定值与标准麦芽糖溶液吸光度比对,计算出淀粉酶活性,结果如表:
名称 | 小麦 | 谷子 | 绿豆 |
未萌发谷物的淀粉活性/U•g﹣1 | 0.0289 | 0.0094 | 0.0074 |
萌发谷物的淀粉酶活性/U•g﹣1 | 5 | 1.7645 | 0.0395 |
试管1 | 试管2 | 试管3 | 试管4 | ||
实验操作 | 蒸馏水(mL | 2 | 2 | 2 | A |
pH=8缓冲液 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |
淀粉溶液(mL) | 1 | 1 | B | 1 | |
甲生物提取液(mL) | C | ||||
乙生物提取液(mL) | D | ||||
丙生物提取液(mL) | E | ||||
37℃的水浴,保温1小时 | |||||
总体积(mL) | 3.8 | 3.8 | 3.8 | 3.8 | |
滴加等量的碘液 | |||||
实验结果 | 颜色深浅程度 | ++ | ﹣ | + | F |
注:“+”显色,“+”越多显色越深;“﹣”不显色 |
某大学科研人员利用双重固定法,即采用戊二醛作交联剂(使酶相互连接),海藻酸钠来包埋小麦酯酶,研究固定化酶的性质,并对其最佳固定条件进行了探究.如图显示的是部分研究结果.(注:酶活力为固定化酶催化化学反应的总效率,包括酶的活性和酶的数量)
温度(℃) | ① | ② | ③ | ④ | ⑤ | ⑥ | ⑦ |
A酶活性(mmol•S﹣1) | 3.1 | 3.8 | 5.8 | 6.3 | 5.4 | 2.9 | 0.9 |
B酶活性(mmol•S﹣1) | 1.1 | 2.2 | 3.9 | ⑧ | 3.4 | 1.9 | 0 |
第一步:取四支试管,分别编号.
第二步:按下表要求完成操作.并在表中各列的字母位置,填写相应试剂的体积量(mL).
试管1 | 试管2 | 试管3 | 试管4 | |
蒸馏水 | 2 | 2 | 2 | A |
pH=8缓冲液 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 |
淀粉溶液 | 1 | 1 | 1 | 1 |
甲生物提取液 | 0.3 | |||
乙生物提取液 | 0.3 | |||
丙生物提取液 | 0.3 | |||
总体积 | 3.8 | 3.8 | 3.8 | 3.8 |
第三步:将上述四支试管放入37℃的水浴,保温1小时.
第四步:取出上述四支试管,冷却后滴入碘液.
第五步:观察比较各支试管溶液颜色及其深浅.
实验结果如下:(“+”表示颜色变化的深浅,“﹣”表示不变色):
试管1 | 试管2 | 试管3 | 试管4 | |
颜色深浅程度 | ++ | ﹣ | + | C |
请回答下列问题: